sábado, 23 de noviembre de 2013

TECNICAS MACROSCOPICAS PROPARASITOSCOPICAS
TAMIZADO
FUNDAMENTO.
Se fundamenta en el fenómeno de la filtración, utilizando tamices de diferentes diámetros en donde se quedan atrapados los parásitos (trematodos, cestodos, nematodos). Esta técnica permite observar directamente las características morfológicas de los parásitos adultos, enteros o fraccionados de los metazoarios. 
MATERIAL Y EQUIPO
1 coladera de tamiz fino
1 abatelenguas
1 caja Petri
1 pinzas
PROCEDIMIENTO
1.- Colocar pequeñas porciones de materia fecal en la coladera con ayuda del abatelenguas.
2.- Dispersar la muestra con el abatelenguas agregarle agua hasta lograr un tamizado lo más limpio posible.
3.- Revisar cuidadosamente las partículas de las heces que hayan quedado en la coladera.
4.- Los parásitos encontrados colocarlos en una caja Petri con solución salina.
5.- Se identifica la parte del parásito o el parásito completo.
RESULTADO:
-No se encontraron parásitos,

- Se encontraron fibras vegetales









domingo, 10 de noviembre de 2013

MÉTODO DE CONCENTRACIÓN POR FLOTACIÓN DE WILLIS

Método de Concentración por Flotación de WILLIS

INTRODUCCIÓN:
este método está recomendado especialmente para la investigación de protozoarios y helmintos. Consiste en preparar la materia fecal con solución saturada de cloruro de sodio.
los huevos y quistes de peso específico menor que la solución saturada de cloruro de sodio tiende a subir y adherirse a un cubreobjetos colocado en contacto con la superficie del líquido.

Material y Reactivos:
·                     vaso de precipitado
·                     embudo                        
·                     gasa
·                     tubo de ensaye
·                     portaobjetos
·                     cubreobjetos
·                     solución saturada de NaCl
·                     solución de yodo-lugol



Procedimiento:

1.    tomar aprox.1 gr de heces fecales con un abateluenguas.
2.    colocar la muestra en un vaso de precipitado y mezclar con 10 ml de solución saturada de cloruro de sodio.
3.    en un tubo de ensaye filtre la mezcla con una gasa, llenando completamente el tubo.
4.    coloque un cubreobjetos sobre el tubo, de manera que el líquido haga contacto con el cubreobjetos.
5.    esperar de 5 a 10 min.
6.    los quistes o huevos flotaran y quedaran adheridos a la cara del cubreobjetos que está en contacto con la mezcla.
7.    colocar una gota de yodo- lugol sobre un portaobjetos, retirar el cubreobjetos con cuidado para evitar perdida de material y ponerlo sobre el portaobjetos.
8.    examinar la muestra al microscopio con el objetivo de 40x, buscando quistes o huevecillos de parásitos.
9.    reportar sus resultados con imágenes.


RESULTADO MUESTRA 1

En esta muestra encontramos huevos de Ascaris lumbricoides   

          
RESULTADO MUESTRA 2

Se encontraron huevecillo de Áscaris lumbricoides








             


sábado, 5 de octubre de 2013

METODO DE CONCENTRACION POR SEDIMENTACION RITCHIE


FUNDAMENTO: Se basa en la concentración de los quistes y huevos por sedimentación mediante la centrifugación, con la ayuda de formol u éter para separar y visualizar los elementos parasitarios.
Unas ventajas que tiene este método es concentrar y no deformar las formas parasitarias, permite el transporte y almacenamiento de la materia fecal procesada antes de ser examinada, se usan cuando se necesita una técnica para evaluación de tratamiento y determinación de frecuencia.


MATERIAL Y EQUIPO


Centrifuga                                                                       soluc. Salina isotónica
Tubos de ensaye cónicos de 15 ml                                soluc. De formaldehido al 10%  
Gasa cortada en cuadros                                               éter
Embudos de polietileno
Vasos de precipitados de 50 ml
Aplicadores de madera
Pipetas Pasteur con bulbo
Portaobjetos de 26X76 mm
Cubreobjetos de 22X22 mm     
Microscopio

METODO
1.- Con el aplicador de madera se coloca aproximadamente 1gr. De la materia fecal en el vaso de precipitado, se añaden 10ml de solución salina y se homogeniza.
2.- Se filtra la suspensión a través de la gasa colocada en el embudo, recogiendo el filtrado con el tubo cónico.
3.- Se centrifuga la suspensión durante 2 min a 2000 rpm.
4.- Se decanta el sobrenadante y se suspende el sedimento con solución salina, centrifugando, decantando y re suspendiendo 2 veces más.
5.- Al último sedimento se agregan 10ml de solución de formaldehído al 10%, se mezcla y se deja reposar durante 10min.
6.- Se añaden después 5ml de éter, se tapan los tubos con tapones de caucho y se agitan enérgicamente durante 30 segundos
7.- Se centrifuga durante 2 min a 2000 rpm
8.- Después de centrifugar se observan 4 capas:
  Ø  Éter en la superficial
  Ø  Un tapón de restos fecales
  Ø  Formaldehido
  Ø  Sedimento en el fondo del tubo, conteniendo los elementos parasitarios.

9.- Se decanta el sobrenadante
10.- Se introduce la pipeta Pasteur hasta el sedimento, se extrae con cuidado una gota del sedimento y se coloca en un portaobjetos
11.- Se le añade una gota de lugol y con uno de los ángulos del cubreobjetos, se homogeniza, cubriéndolo con el mismo.

12.- Se observa la preparación en el microscopio con objetivos de 10X y 40X.



  



Resultado: En nuestro frotis encontramos quistes de Entamoeba Coli.








miércoles, 25 de septiembre de 2013

Practica
“Método de concentración-flotación de Faust  BIS"

-Fundamento:
Este método se utiliza solución de Zn, cuya densidad especifica es de 1.180 (33%), que conforma un medio de densidad más alta que la de los huevos: Necátor 1.055, Tricocéfalo 1.150, Áscaris fértil 1.110 y facilita que los huevos livianos de estos helmintos, con menor peso específico que la solución, se concentren y floten.
-Materiales y reactivos:
-Vaso de precipitados                                       -Sol. De sulfato de zinc
-Tubos de ensaye de                                        -Sol. Yodo Lugol
-Embudo de cristal
-Gradilla
-Gasa estéril
-Aplicador de madera
-Abate lenguas
-Asa de platino
-Mechero de bunsen
-Porta objetos y cubre objetos

-Técnica:
1 Mezclar bien una porción de materia fecal para preparar una superficie en 10 partes de agua destilada.

2 Filtrar la suspensión a través de una gasa doblada en 4, sobre un tubo de ensaye, ayudándose con un embudo pequeño.
3 Centrifugar el filtrado a 2500 rpm por 1 min   
4 Decantar el líquido sobrenadante y completar con agua hasta igualar la medida anterior, centrifugar nuevamente. Resuspender el sedimento.
5 Repetir el procedimiento 2 veces hasta que el liquido sobrenadante este listo.
6 Decantar nuevamente el líquido sobrenadante remplazándolo por igual cantidad de solución de sulfato de Zn al 333%. Mezclar bien la solución con el sedimento. Centrifugar durante 1 min. A 1500 rpm
7 Tomar de 3-4 gotas de las partículas que floten en la superficie del líquido. Colocarlos en un porta-objeto y mezclarle con 1-2 gotas de lugol, colocar el cubre-objeto.
RESULTADO:
-La muestra contenía quistes de Entamoeba coli, los cuales son parte de la flora normal del intestino.
-Se encontraron fibras vegetales.








sábado, 21 de septiembre de 2013

Practica
“Método de concentración-flotación de Faust”



Fundamento:
Este método se utiliza solución de Zn, cuya densidad especifica es de 1.180 (33%), que conforma un medio de densidad más alta que la de los huevos: Necátor 1.055, Tricocéfalo 1.150, Áscaris fértil 1.110 y facilita que los huevos livianos de estos helmintos, con menor peso específico que la solución, se concentren y floten.



-Materiales:
-Vaso de precipitados                                       -Sol. De sulfato de zinc
-Tubos de ensaye de                                        -Sol. Yodo Lugol
-Embudo de cristal
-Gradilla
-Gasa estéril
-Aplicador de madera
-Abate lenguas
-Asa de platino
-Mechero de bunsen
-Porta objetos y cubre objetos

-Técnica:
1 Mezclar bien una porción de materia fecal para preparar una superficie en 10 partes de agua destilada.
2 Filtrar la suspensión a través de una gasa doblada en 4, sobre un tubo de ensaye, ayudándose con un embudo pequeño.
3 Centrifugar el filtrado a 2500 rpm por 1 min   
4 Decantar el líquido sobrenadante y completar con agua hasta igualar la medida anterior, centrifugar nuevamente. Resuspender el sedimento.
5 Repetir el procedimiento 2 veces hasta que el liquido sobrenadante este listo.
6 Decantar nuevamente el líquido sobrenadante remplazándolo por igual cantidad de solución de sulfato de Zn al 333%. Mezclar bien la solución con el sedimento. Centrifugar durante 1 min. A 1500 rpm
7 Tomar de 3-4 gotas de las partículas que floten en la superficie del líquido. Colocarlos en un porta-objeto y mezclarle con 1-2 gotas de lugol, colocar el cubre-objeto.

RESULTADO:
-La muestra estaba libre de parásitos.
-Se encontraron fibras vegetales



             











viernes, 30 de agosto de 2013


‘’MÉTODO C.P.S. DIRECTO O EN FRESCO´´





I.- FUNDAMENTO
La solución salina isotónica de las condiciones adecuadas para que la célula se mantenga viva. El medio ideal parta todo tipo de parásitos que pueda encontrarse en la muestra de heces, en cualquier etapa de su desarrollo, es la solución salina fisiológica, y el lugol en la práctica ha demostrado su eficacia para la tinción e identificación de parásitos intestinales.

II.- MATERIAL
-Muestra fecal
-Aplicadores de madera
-Porta objetos de 25 X 76
-Cubreobjetos
-Solución salina
-Lugol parasitológico
IV.- TÉCNICA
-En un porta objetos colocar una gota de solución salina isotónica
-Con la punta del aplicador tomar una pequeña muestra de aproximadamente 1 a 4 mg de heces, en muestras con moco y sangre, elegir esta parte para estudiar.
-Mezclar, procurando hacer una suspensión en preparación delgada y no un frotis.
-Quitar de la suspensión fibras y otros fragmentos grandes.
-Colocar el cubreobjetos lentamente procurando no dejar burbujas
-Examinar al microscopio en forma sistemática, a seco débil y a seco fuerte.
-Repetir la operación con una gota de lugol en lugar de la solución salina

 V.- RESULTADO
1-La muestra 1 realizada con solución salina y con solución lugol contenía almidón fibras vegetales y animales
2.-La muestra 2 solo contenía fibras vegetales.

VI-  INACTIVACION
-Al principio y al final de la práctica la mesa de trabajo debe de limpiarse con una solución clorada para la lisis de cualquier parasito.
-El material de vidrio debe de lavarse con agua, cloro y jabón
-Todo el material de madera ocupado debe de incinerarse, previo a esto podrá desecharse
-Tanto guantes como cubre bocas deberá de desecharse en RPBI de polietileno.

COMENTARIO.
-Con esta nos damos una pequeña introducción hacia el mundo de los parásitos, y como se debe de manejar el material en un laboratorio, así como las muestras para un diagnostico con calidad.